Os insetos possuem diversas estratégias alimentares e uma delas é a utilização de substratos
lignocelulósicos como fonte de energia, o que torna esses organismos uma fonte ideal para
prospecção de novas enzimas celulolíticas. A matéria orgânica utilizada como recurso
alimentar, geralmente, está colonizada por microrganismos. Estes convertem o substrato
vegetal a um estado nutricional palatável, por meio da produção de enzimas que degradam este
polímero. A busca por novas fontes de produção de enzimas celulolíticas trouxe evidências
crescentes de que as celulases, também, estão presentes no reino animal, particularmente em
insetos. Assim, este estudo teve como objetivos identificar a diversidade de fungos filamentosos
cultiváveis associados ao trato digestório de larvas de três insetos aquáticos fragmentadores,
avaliar qualitativamente e quantitativamente a produção de enzimas celulolíticas de fungos
filamentosos cultiváveis associados ao trato digestório de larvas de insetos aquáticos
fragmentadores e descrever o perfil de expressão gênica de celulases do trato digestório de
larvas de Phylloicus amazonas (Insecta: Trichoptera). Larvas de três gêneros de insetos
aquáticos: Phylloicus (Trichoptera), Triplectides (Trichoptera) e Stenochironomus (Diptera)
foram estudadas. Foram identificados um total de 28 morfoespécies associadas ao intestino das
larvas desses insetos, compreendendo Aspergillus, Cladosporium, Paecilomyces, Penicillium,
Pestalotiopsis e Trichoderma. Quanto a avaliação qualitativa da produção de enzimas
celulolíticas, 176 isolados produziram halo de hidrólise. Os resultados da análise enzimática,
realizada através da quantificação dos açúcares redutores, demonstraram que o fungo
Penicillium sp. A2PA4 possui uma boa capacidade na degradação da celulose. Por meio da
análise do transcriptoma do intestino das larvas de Phylloicus amazonas Pather, 2003 foi
possível encontrar a assinatura de genes de Endoglucanase e β-glucosidase. Os resultados
obtidos indicam que o intestino de larvas de insetos aquáticos é um substrato com potencial
tanto para bioprospecção de fungos produtores de enzimas celulolíticas, quanto genes de
celulase endógena.
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