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Relatório de Pesquisa
Avaliação do potencial antimicrobiano do extrato foliar de plantas coletadas na reserva do Campus da UFAM
A busca de novas substâncias com propriedades antimicrobianas vem se intensificando a cada dia, dado o número cada vez maior de microrganismos que apresentam resistência aos antibióticos usuais. A resistência microbiana está aumentando e a perspectiva para o uso de drogas antimicrobianas no futuro é...
Autor principal: | Nani Oliveira Carvalho |
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Grau: | Relatório de Pesquisa |
Idioma: | pt_BR |
Publicado em: |
Universidade Federal do Amazonas
2016
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Assuntos: | |
Acesso em linha: |
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oai:localhost:prefix-34902021-11-28T21:48:24Z Avaliação do potencial antimicrobiano do extrato foliar de plantas coletadas na reserva do Campus da UFAM Nani Oliveira Carvalho Raimundo Felipe da Cruz Filho Folha Antagonismo Novos antibióticos CIÊNCIAS DA SAÚDE: FARMÁCIA A busca de novas substâncias com propriedades antimicrobianas vem se intensificando a cada dia, dado o número cada vez maior de microrganismos que apresentam resistência aos antibióticos usuais. A resistência microbiana está aumentando e a perspectiva para o uso de drogas antimicrobianas no futuro é ainda indecisa. Portanto, ações devem ser tomadas para reduzir esse problema, por exemplo, controlar o uso de antibióticos, desenvolver pesquisas para a melhor compreensão do mecanismo genético de resistência, e continuar estudos para desenvolver novas drogas, sintéticas ou naturais. Em muitas comunidades e grupos étnicos, o conhecimento sobre plantas medicinais simboliza geralmente o único recurso terapêutico. O uso de plantas no tratamento e na cura de enfermidades é tão antigo, quanto à espécie humana. Em função do exposto acima há a necessidade de se avaliar o potencial antimicrobiano em espécies da família Myrtaceae, Asteraceae, Anacardiaceae e Oxalidaceae. As folhas serão coletadas em plantas domesticas e em plantas nativas na reserva do Campus universitário. O material coletado será triturada em água destilada, centrifugada 8000xg e o sobrenadante filtrado em membrana 0,22 µm e armazenado em tubo Falcon 15mL. As folhas também serão submetidas à secagem a 50ºC por 24h. Os testes do potencial antimicrobiano será o de difusão em ágar (Kirby-Bauer) e se confirmadas à presença de antagonismo será realizada uma bioautografia para se determinar o Rf das moléculas antibióticas. Os micro-organismos testes serão repicados em meio Plate Count Agar (PCA) e incubadas a 37ºC por 24 horas antes dos testes. Para o preparo do inóculo, as culturas jovens de cada micro-organismo serão padronizadas em salina estéril segundo a escala 0,5 de MacFarland. Os extratos testados serão o líquido filtrado e o em pó hidratado 10%(p/v). A Semeadura será tipo tapete utilizando Swab , 100µL dos extratos serão colocados em Cup plate incubados por 24h a 37ºC. Os extratos que forem positivos nos ensaios biológicos serão pesados e realizados diluições seriadas ao dobro em água destilada (200mg / 2mL). Transferindo-se um mL dessa diluição para o tubo subsequente, até 10-8. Em cada tubo, contendo as respectivas diluições, adicionando-se 19,0 mL de ágar Mueller-Hinton, que foram vertidas em placas de Petri. Dessa forma, obteve-se a faixa de concentração de 5 a 0,04 mg/mL. A Semeadura será tipo tapete utilizando Swab . A CIM será considerada a menor concentração que inibiu o desenvolvimento microbiano (FERNANDES et al., 2005). A toxicidade será determinada pelo teste frente à Artemia salina. FAPEAM 2016-09-23T15:35:55Z 2016-09-23T15:35:55Z 2013-07-31 Relatório de Pesquisa http://riu.ufam.edu.br/handle/prefix/3490 pt_BR Acesso Aberto PDF Universidade Federal do Amazonas Brasil Parasitologia Instituto de Ciências Biológicas PROGRAMA PIBIC 2012 UFAM |
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A busca de novas substâncias com propriedades antimicrobianas vem se intensificando a cada dia, dado o número cada vez maior de microrganismos que apresentam resistência aos antibióticos usuais. A resistência microbiana está aumentando e a perspectiva para o uso de drogas antimicrobianas no futuro é ainda indecisa. Portanto, ações devem ser tomadas para reduzir esse problema, por exemplo, controlar o uso de antibióticos, desenvolver pesquisas para a melhor compreensão do mecanismo genético de resistência, e continuar estudos para desenvolver novas drogas, sintéticas ou naturais. Em muitas comunidades e grupos étnicos, o conhecimento sobre plantas medicinais simboliza geralmente o único recurso terapêutico. O uso de plantas no tratamento e na cura de enfermidades é tão antigo, quanto à espécie humana. Em função do exposto acima há a necessidade de se avaliar o potencial antimicrobiano em espécies da família Myrtaceae, Asteraceae, Anacardiaceae e Oxalidaceae. As folhas serão coletadas em plantas domesticas e em plantas nativas na reserva do Campus universitário. O material coletado será triturada em água destilada, centrifugada 8000xg e o sobrenadante filtrado em membrana 0,22 µm e armazenado em tubo Falcon 15mL. As folhas também serão submetidas à secagem a 50ºC por 24h. Os testes do potencial antimicrobiano será o de difusão em ágar (Kirby-Bauer) e se confirmadas à presença de antagonismo será realizada uma bioautografia para se determinar o Rf das moléculas antibióticas. Os micro-organismos testes serão repicados em meio Plate Count Agar (PCA) e incubadas a 37ºC por 24 horas antes dos testes. Para o preparo do inóculo, as culturas jovens de cada micro-organismo serão padronizadas em salina estéril segundo a escala 0,5 de MacFarland. Os extratos testados serão o líquido filtrado e o em pó hidratado 10%(p/v). A Semeadura será tipo tapete utilizando Swab , 100µL dos extratos serão colocados em Cup plate incubados por 24h a 37ºC. Os extratos que forem positivos nos ensaios biológicos serão pesados e realizados diluições seriadas ao dobro em água destilada (200mg / 2mL). Transferindo-se um mL dessa diluição para o tubo subsequente, até 10-8. Em cada tubo, contendo as respectivas diluições, adicionando-se 19,0 mL de ágar Mueller-Hinton, que foram vertidas em placas de Petri. Dessa forma, obteve-se a faixa de concentração de 5 a 0,04 mg/mL. A Semeadura será tipo tapete utilizando Swab . A CIM será considerada a menor concentração que inibiu o desenvolvimento microbiano (FERNANDES et al., 2005). A toxicidade será determinada pelo teste frente à Artemia salina. |
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